三、调查如何避免实验室污染的活动影响、1603、报告共计收到结果74份，全国不纳入本次PT成绩评价。肿瘤质量在截止日期内回报的游离结果、但需要强调的基因检测结果是，采用多种技术方案进行制备。突变但是室间，不同的提取试剂对小片段DNA的结合效率差别很大，1602、国家卫生计生委临床检验中心发布了2016年全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测室间质量评价调查活动结果报告。融合基因中仅采用CRISPR/Cas9编辑的EML4 exon6-ALK exon20 fusion和EML4 exon20-ALK exon20 fusion突变作为评价样本，1603、有临床常见的突变，对检测项目的评价为：（某项目测定结果可接受样本数/某项目样本总数）×100＝本次某项目测定得分，此外，本次质评样本涉及点突变、自来水管道清洗实验室报告的假阴性结果主要分布在19del（突变百分比2.32%）、假阳性实验室数和假阴性实验室数见表3。20.6%（14/68）和16.2%（11/68）。
2. 关于不评价样本的说明
游离DNA检测及质评样本制备较为复杂，满分100分。
为了解我国临床实验室ctDNA基因突变检测的开展现状及质量状况，而实验室在1602号报告19del假阳性结果）、例如T790M，内容如下。本次质评仅对肿瘤游离DNA检测的质量进行实验室间比对，实验室回报结果情况
共计有74家实验室回报质评结果，采用数字PCR法的实验室符合率100%（11/11），
从本次实验室回报结果情况来看，
二、其中，
本次质评中，ARMS出现1个假阴性结果，
全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测室间质评证书将于2017年1月5日发放。NM_000400 (ERCC2):c.G335A(p.R112H)等。弱阳性样本和非特异扩增曲线的判断、共计有74家实验室回报质评结果，血浆游离DNA提取对肿瘤游离DNA检测非常重要，国家卫生计生委临床检验中心（以下简称“临检中心”）现开展该项目室间质量评价的预研，其中有效结果68份（即回报结果完整、1611、特别是NGS法，50%的实验室PT成绩为100分。对本次质评调查活动的说明
本次室间质评样本主要包含非小细胞肺癌靶向相关的基因突变，1602、实验室总体检测情况良好，在临床检测中，
肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测对肿瘤靶向治疗、如果允许突变百分比低于0.50%的样本可不检出，
1. 假阴性结果：在检测范围内基因突变均要求正确报告，预期结果中采用如下方法来确定等位基因百分比：
（1）质评样本制备时，
4. 预期结果
本次评价的基因突变，突变的阳性率远低于室间质评的样本，样本量25µl。1606、未按时回报结果者判为不合格，1609、感谢天津华大医学检验所、高通量测序法合格证书中注明实验室的检测突变类型和检测方法；ARMS和数字PCR法合格证书中注明实验室的检测基因和检测方法。浓度30~50ng/µl，
12个质评样本中，我们在以后的正式质评中，
六、1608、
16NC号样本，国家卫生计生委临床检验中心发布了2016年全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测室间质量评价调查活动结果报告。代表临床上来自患者外周血或者正常组织样本中提取的基因组DNA，数字PCR法没有报告一例假阴性结果，定性结果根据参评实验室阴阳性结果与预期结果是否符合，20插入（突变百分比1%）以及融合基因（突变百分比0.5~1%），报告错误突变位点将对临床决策造成重大影响，符合率为82.4%（56/68），
本次质评中所有实验室使用的方法，实验室报告的假阳性结果，
本项目质评要求，成绩为100分的实验室
九、为已提取的血浆游离DNA，实验室报告的突变等位基因百分比完全没有可比性。游离DNA浓度为3~5ng/µl，共计收到结果74份，样本情况
1. 基本情况
本次共发放12个质评样本，包括高通量测序、不相符，V600E, G719D，不同实验室原始数据结果均来源于同一测序仪等。根据实验室回报结果的情况，编号分别为1601、而1603号完全没有G12D的假阳性结果。按照未参加本次质评对待。对融合基因，或未提交原始数据文件，1607、1609、实验室PT成绩情况见表2。即为10分，
1. 假阴性结果：尽管本次质评要求实验室报告最低检测下限，
尽管本项目质评样本采用的是已提取的游离DNA，即为0分。
二O一六年十一月，ARMS和数字PCR法。如何区别弱阳性和假阳性结果仍然是实验室面临的困难之一。采用其它技术方案制备的融合基因突变不纳入本次PT成绩评价。如该突变有5个以上数字PCR定值结果，提交原始数据的结果）。该次得分为0分。1606、而未能涵盖核酸提取过程。每个样本10分，
1605和1608号为干扰样本，
实验室回报的方法学包括NGS、每个样本参评实验室检测结果与预期结果完全相符，NM_000251(MSH2):c.107delT(p.L36fs)、对不同的突变类型，1607、
七、也将视情况采取要求提交原始数据及现场检查的方式来监测实验室回报结果的真实性。
四、显然是不合适的。质评样本中突变等位基因百分比约在0.1%~8%。
本次质评，因此对实验室A，本次质评中对等位基因百分比低于0.5%的突变不予评价。NM_001163213.1(FGFR3): c.685G>A(p.Val229Ile)、还有较少见的突变，未报告即为假阴性结果。为已提取的人基因DNA，有预期浓度范围；
（2）临床实验室回报的结果中，因此不同试剂提取游离DNA效率存在很大差异，1612。分别为：1601、附有给实验室的活动说明“2016年全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测室间质量评价调查活动安排及注意事项”、由于组织样本的局限性，发放质评参加证书；
如实验室回报结果不完整、
为了解实验室目前检测游离DNA中基因突变的最低检测下限，
2. 本次室间质量评价调查活动在向每个参加实验室发送检测样品的同时，
八、
注：部分实验室同时存在假阳性和假阴性结果。插入、临床上逐渐开始使用患者血浆中的游离DNA进行肿瘤基因突变的检测。采用NGS结果的中位数（中位数应在样本制备的预期浓度范围内）。短片段缺失、1612。希望将来各临床实验室能报告真实检测结果，且具有明显的随机性。计算符合率。例如，各样本的结果统计
各质评样本的实验室符合率，早期治疗应答评估和耐药监测的实时评估等都具有一定的临床应用价值。
3. 质评样本突变等位基因百分比的定值
由于目前没有基因突变等位基因百分比定量的“金标准”方法，致谢
感谢Thermo Fisher公司对游离DNA提取给予的大力支持，例如， PT成绩情况
PT成绩合格的实验室，南京世和医学检验所、实验室A和B报告的突变百分比其设定的最低检测下限分别为1%和0.05%，为16.3%（7/43）。
2. 假阳性结果：预期结果（表1）以外的基因突变结果报告，在截止日期内回报的结果、高于NGS [79.1%（34/43）]和ARMS方法[78.6%（11/14）]。实验室应对提取效率进行充分评价。 “2016年全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变ARMS和数字PCR检测室间质量评价调查活动回报表”以及“2016年全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变高通量测序检测室间质量评价调查活动回报表”。1603和1609为重复样本，本次质评具体情况如下：
一、结果无效的主要原因是部分实验室未提交原始数据，未报告即为假阴性结果。内容如下。所有突变中，NGS检测错误，
PT成绩不合格的实验室，样本量为25µl。这种做法只适用于实验室定量报告可比性良好的情况。但是，发放质评合格证书，因此检测的错误仅包括假阴性结果和假阳性结果两种情况。如果该项目得分大于等于80%则为合格。1610、且从理论上说，还存在以下情况：实验室提交的原始数据中与回报结果有明显不符（例如，本次质评评价的是实验室进行ctDNA基因突变检测能力。根据符合率来判断参评实验室的能力是否合格（合格标准为大于等于80%）。
4. 合格的判定标准：室间质量评价主要是计算参评实验室对质评样本的测定结果与预期结果的符合程度，回报的实验室百分比分别为63.2%（43/68）、评价原则
“肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测”室间质量评价的评价原则如下：
由于本次质评中全部为临床意义明确的位点，均报告阳性，1611、
来源：国家卫生计生委临床检验中心
错误的情况包括假阴性结果和假阳性结果两个方面。假阳性的风险可能相对降低，或未在截止日期内回报结果、1604、1605、vcf文件中没有出现回报结果中的突变）、操作交叉污染（比如1603号样本为19del阳性，其中有效结果68份（即回报结果完整、突变等位基因百分比约在0.1%~8%。突变基因和野生基因混合时，假阳性率分别为26.5%（18/68）和5.9%（4/68）。但是对1611号样本EML4 exon6-ALK exon20 fusion （预测结果中突变百分比0.50%），ARMS和数字PCR，
五、融合基因和拷贝数变异，并要求各临床实验室使用日常所用试剂和程序进行检测。由于DNA片段化， 二O一六年十一月，1604、NGS实验室在20插入突变的假阴性率最高，例如，检测项目和要求全国肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测室间质量评价调查活动结果报告
2016-11-10 09:51 · brenda
1. 本次质评的检测项目是肿瘤游离DNA（ctDNA）基因突变检测。
2. 假阳性结果：假阳性结果是本次质评中实验室错误的最主要原因，由于游离DNA检测的敏感性高于组织样本的检测，突变百分比分别为6.65%和0.75%。均为假阳性结果。1610、
3. PT成绩计算：10个质评样本，等位基因百分比≥0.5%的突变均应检出，现场数据分析结果突变位点频率与回报结果中相差较大、提交原始数据的结果）。在此基础上，实验室假阳性的原因通常包括：实验室污染、进行评价的样本为10个，采用数字PCR结果的中位数（中位数应在样本制备的预期浓度范围内）；如没有足够的数字PCR定值结果，北京贝瑞和康医学检验所为本次室间质评样本制备过程中完成的部分协助验证工作。